# HG changeset patch # User jackcurragh # Date 1667481720 0 # Node ID a511e084e4e789d4bd22c31a99aa1d1c2554777b # Parent 104d6756bcbcd0bdb9bb97cfe9309beb19b048bf Uploaded diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 bowtie_rRNA_removal_wrapper/bowtie_rRNA_tRNA_removal_wrapper.py --- a/bowtie_rRNA_removal_wrapper/bowtie_rRNA_tRNA_removal_wrapper.py Tue Jul 12 13:40:46 2022 +0000 +++ /dev/null Thu Jan 01 00:00:00 1970 +0000 @@ -1,497 +0,0 @@ -#!/usr/bin/env python - -""" -Runs Bowtie on single-end or paired-end data. - -usage: bowtie_wrapper.py [options] - -t, --threads=t: The number of threads to run - -o, --output=o: The output file - --output_unmapped_reads=: File name for unmapped reads (single-end) - --output_unmapped_reads_l=: File name for unmapped reads (left, paired-end) - --output_unmapped_reads_r=: File name for unmapped reads (right, paired-end) - --output_suppressed_reads=: File name for suppressed reads because of max setting (single-end) - --output_suppressed_reads_l=: File name for suppressed reads because of max setting (left, paired-end) - --output_suppressed_reads_r=: File name for suppressed reads because of max setting (right, paired-end) - --output_mapping_stats=: File name for mapping statistics (output on stderr by bowtie) - -i, --input1=i: The (forward or single-end) reads file in Sanger FASTQ format - -I, --input2=I: The reverse reads file in Sanger FASTQ format - -4, --dataType=4: The type of data (SOLiD or Solexa) - -2, --paired=2: Whether the data is single- or paired-end - -g, --genomeSource=g: The type of reference provided - -r, --ref=r: The reference genome to use or index - -s, --skip=s: Skip the first n reads - -a, --alignLimit=a: Only align the first n reads - -T, --trimH=T: Trim n bases from high-quality (left) end of each read before alignment - -L, --trimL=L: Trim n bases from low-quality (right) end of each read before alignment - -m, --mismatchSeed=m: Maximum number of mismatches permitted in the seed - -M, --mismatchQual=M: Maximum permitted total of quality values at mismatched read positions - -l, --seedLen=l: Seed length - -n, --rounding=n: Whether or not to round to the nearest 10 and saturating at 30 - -P, --maxMismatches=P: Maximum number of mismatches for -v alignment mode - -w, --tryHard=: Whether or not to try as hard as possible to find valid alignments when they exist - -V, --allValAligns=V: Whether or not to report all valid alignments per read or pair - -v, --valAlign=v: Report up to n valid alignments per read or pair - -G, --suppressAlign=G: Suppress all alignments for a read if more than n reportable alignments exist - -b, --best=b: Whether or not to make Bowtie guarantee that reported singleton alignments are 'best' in terms of stratum and in terms of the quality values at the mismatched positions - -B, --maxBacktracks=B: Maximum number of backtracks permitted when aligning a read - -R, --strata=R: Whether or not to report only those alignments that fall in the best stratum if many valid alignments exist and are reportable - -j, --minInsert=j: Minimum insert size for valid paired-end alignments - -J, --maxInsert=J: Maximum insert size for valid paired-end alignments - -O, --mateOrient=O: The upstream/downstream mate orientation for valid paired-end alignment against the forward reference strand - -A, --maxAlignAttempt=A: Maximum number of attempts Bowtie will make to match an alignment for one mate with an alignment for the opposite mate - -f, --forwardAlign=f: Whether or not to attempt to align the forward reference strand - -E, --reverseAlign=E: Whether or not to attempt to align the reverse-complement reference strand - -F, --offrate=F: Override the offrate of the index to n - -8, --snpphred=8: SNP penalty on Phred scale - -6, --snpfrac=6: Fraction of sites expected to be SNP sites - -7, --keepends=7: Keep extreme-end nucleotides and qualities - -S, --seed=S: Seed for pseudo-random number generator - -C, --params=C: Whether to use default or specified parameters - -u, --iautoB=u: Automatic or specified behavior - -K, --ipacked=K: Whether or not to use a packed representation for DNA strings - -Q, --ibmax=Q: Maximum number of suffixes allowed in a block - -Y, --ibmaxdivn=Y: Maximum number of suffixes allowed in a block as a fraction of the length of the reference - -D, --idcv=D: The period for the difference-cover sample - -U, --inodc=U: Whether or not to disable the use of the difference-cover sample - -y, --inoref=y: Whether or not to build the part of the reference index used only in paired-end alignment - -z, --ioffrate=z: How many rows get marked during annotation of some or all of the Burrows-Wheeler rows - -W, --iftab=W: The size of the lookup table used to calculate an initial Burrows-Wheeler range with respect to the first n characters of the query - -X, --intoa=X: Whether or not to convert Ns in the reference sequence to As - -N, --iendian=N: Endianness to use when serializing integers to the index file - -Z, --iseed=Z: Seed for the pseudorandom number generator - -x, --indexSettings=x: Whether or not indexing options are to be set - -H, --suppressHeader=H: Suppress header - --do_not_build_index: Flag to specify that provided file is already indexed and to just use 'as is' -""" - -import optparse -import os -import shutil -import subprocess -import sys -import tempfile - -# Allow more than Sanger encoded variants -DEFAULT_ASCII_ENCODING = '--phred33-quals' -GALAXY_FORMAT_TO_QUALITY_SCORE_ENCODING_ARG = {'fastqsanger': '--phred33-quals', 'fastqillumina': '--phred64-quals', 'fastqsolexa': '--solexa-quals'} -# FIXME: Integer quality scores are supported only when the '--integer-quals' argument is specified to bowtie; this is not currently able to be set in the tool/wrapper/config - - -def stop_err( msg ): - sys.exit('%s\n' % msg) - - -def __main__(): - parser = optparse.OptionParser() - parser.add_option( '-t', '--threads', dest='threads', help='The number of threads to run' ) - parser.add_option( '-o', '--output', dest='output', help='The output file' ) - parser.add_option( '', '--output_unmapped_reads', dest='output_unmapped_reads', help='File name for unmapped reads (single-end)' ) - parser.add_option( '', '--output_unmapped_reads_l', dest='output_unmapped_reads_l', help='File name for unmapped reads (left, paired-end)' ) - parser.add_option( '', '--output_unmapped_reads_r', dest='output_unmapped_reads_r', help='File name for unmapped reads (right, paired-end)' ) - parser.add_option( '', '--output_suppressed_reads', dest='output_suppressed_reads', help='File name for suppressed reads because of max setting (single-end)' ) - parser.add_option( '', '--output_suppressed_reads_l', dest='output_suppressed_reads_l', help='File name for suppressed reads because of max setting (left, paired-end)' ) - parser.add_option( '', '--output_suppressed_reads_r', dest='output_suppressed_reads_r', help='File name for suppressed reads because of max setting (right, paired-end)' ) - parser.add_option( '', '--output_mapping_stats', dest='output_mapping_stats', help='File for mapping statistics (i.e. stderr from bowtie)' ) - parser.add_option( '-4', '--dataType', dest='dataType', help='The type of data (SOLiD or Solexa)' ) - parser.add_option( '-i', '--input1', dest='input1', help='The (forward or single-end) reads file in Sanger FASTQ format' ) - parser.add_option( '-I', '--input2', dest='input2', help='The reverse reads file in Sanger FASTQ format' ) - parser.add_option( '-2', '--paired', dest='paired', help='Whether the data is single- or paired-end' ) - parser.add_option( '-g', '--genomeSource', dest='genomeSource', help='The type of reference provided' ) - parser.add_option( '-r', '--ref', dest='ref', help='The reference genome to use or index' ) - parser.add_option( '-s', '--skip', dest='skip', help='Skip the first n reads' ) - parser.add_option( '-a', '--alignLimit', dest='alignLimit', help='Only align the first n reads' ) - parser.add_option( '-T', '--trimH', dest='trimH', help='Trim n bases from high-quality (left) end of each read before alignment' ) - parser.add_option( '-L', '--trimL', dest='trimL', help='Trim n bases from low-quality (right) end of each read before alignment' ) - parser.add_option( '-m', '--mismatchSeed', dest='mismatchSeed', help='Maximum number of mismatches permitted in the seed' ) - parser.add_option( '-M', '--mismatchQual', dest='mismatchQual', help='Maximum permitted total of quality values at mismatched read positions' ) - parser.add_option( '-l', '--seedLen', dest='seedLen', help='Seed length' ) - parser.add_option( '-n', '--rounding', dest='rounding', help='Whether or not to round to the nearest 10 and saturating at 30' ) - parser.add_option( '-P', '--maxMismatches', dest='maxMismatches', help='Maximum number of mismatches for -v alignment mode' ) - parser.add_option( '-w', '--tryHard', dest='tryHard', help='Whether or not to try as hard as possible to find valid alignments when they exist' ) - parser.add_option( '-V', '--allValAligns', dest='allValAligns', help='Whether or not to report all valid alignments per read or pair' ) - parser.add_option( '-v', '--valAlign', dest='valAlign', help='Report up to n valid alignments per read or pair' ) - parser.add_option( '-G', '--suppressAlign', dest='suppressAlign', help='Suppress all alignments for a read if more than n reportable alignments exist' ) - parser.add_option( '-b', '--best', dest='best', help="Whether or not to make Bowtie guarantee that reported singleton alignments are 'best' in terms of stratum and in terms of the quality values at the mismatched positions" ) - parser.add_option( '-B', '--maxBacktracks', dest='maxBacktracks', help='Maximum number of backtracks permitted when aligning a read' ) - parser.add_option( '-R', '--strata', dest='strata', help='Whether or not to report only those alignments that fall in the best stratum if many valid alignments exist and are reportable' ) - parser.add_option( '-j', '--minInsert', dest='minInsert', help='Minimum insert size for valid paired-end alignments' ) - parser.add_option( '-J', '--maxInsert', dest='maxInsert', help='Maximum insert size for valid paired-end alignments' ) - parser.add_option( '-O', '--mateOrient', dest='mateOrient', help='The upstream/downstream mate orientation for valid paired-end alignment against the forward reference strand' ) - parser.add_option( '-A', '--maxAlignAttempt', dest='maxAlignAttempt', help='Maximum number of attempts Bowtie will make to match an alignment for one mate with an alignment for the opposite mate' ) - parser.add_option( '-f', '--forwardAlign', dest='forwardAlign', help='Whether or not to attempt to align the forward reference strand' ) - parser.add_option( '-E', '--reverseAlign', dest='reverseAlign', help='Whether or not to attempt to align the reverse-complement reference strand' ) - parser.add_option( '-F', '--offrate', dest='offrate', help='Override the offrate of the index to n' ) - parser.add_option( '-S', '--seed', dest='seed', help='Seed for pseudo-random number generator' ) - parser.add_option( '-8', '--snpphred', dest='snpphred', help='SNP penalty on Phred scale' ) - parser.add_option( '-6', '--snpfrac', dest='snpfrac', help='Fraction of sites expected to be SNP sites' ) - parser.add_option( '-7', '--keepends', dest='keepends', help='Keep extreme-end nucleotides and qualities' ) - parser.add_option( '-C', '--params', dest='params', help='Whether to use default or specified parameters' ) - parser.add_option( '-u', '--iautoB', dest='iautoB', help='Automatic or specified behavior' ) - parser.add_option( '-K', '--ipacked', dest='ipacked', help='Whether or not to use a packed representation for DNA strings' ) - parser.add_option( '-Q', '--ibmax', dest='ibmax', help='Maximum number of suffixes allowed in a block' ) - parser.add_option( '-Y', '--ibmaxdivn', dest='ibmaxdivn', help='Maximum number of suffixes allowed in a block as a fraction of the length of the reference' ) - parser.add_option( '-D', '--idcv', dest='idcv', help='The period for the difference-cover sample' ) - parser.add_option( '-U', '--inodc', dest='inodc', help='Whether or not to disable the use of the difference-cover sample' ) - parser.add_option( '-y', '--inoref', dest='inoref', help='Whether or not to build the part of the reference index used only in paired-end alignment' ) - parser.add_option( '-z', '--ioffrate', dest='ioffrate', help='How many rows get marked during annotation of some or all of the Burrows-Wheeler rows' ) - parser.add_option( '-W', '--iftab', dest='iftab', help='The size of the lookup table used to calculate an initial Burrows-Wheeler range with respect to the first n characters of the query' ) - parser.add_option( '-X', '--intoa', dest='intoa', help='Whether or not to convert Ns in the reference sequence to As' ) - parser.add_option( '-N', '--iendian', dest='iendian', help='Endianness to use when serializing integers to the index file' ) - parser.add_option( '-Z', '--iseed', dest='iseed', help='Seed for the pseudorandom number generator' ) - parser.add_option( '-x', '--indexSettings', dest='index_settings', help='Whether or not indexing options are to be set' ) - parser.add_option( '-H', '--suppressHeader', dest='suppressHeader', help='Suppress header' ) - parser.add_option( '--galaxy_input_format', dest='galaxy_input_format', default="fastqsanger", help='galaxy input format' ) - parser.add_option( '--do_not_build_index', dest='do_not_build_index', action="store_true", default=False, help='Flag to specify that provided file is already indexed, use as is' ) - (options, args) = parser.parse_args() - if options.mismatchSeed and options.maxMismatches: - parser.error("options --mismatchSeed and --maxMismatches are mutually exclusive") - stdout = '' - - # make temp directory for placement of indices and copy reference file there if necessary - tmp_index_dir = tempfile.mkdtemp() - # get type of data (solid or solexa) - if options.dataType == 'solid': - colorspace = '-C' - else: - colorspace = '' - # index if necessary - if options.genomeSource == 'history' and not options.do_not_build_index: - # set up commands - if options.index_settings == 'indexPreSet': - indexing_cmds = '%s' % colorspace - else: - try: - if options.iautoB and options.iautoB == 'set': - iautoB = '--noauto' - else: - iautoB = '' - if options.ipacked and options.ipacked == 'packed': - ipacked = '--packed' - else: - ipacked = '' - if options.ibmax and int( options.ibmax ) >= 1: - ibmax = '--bmax %s' % options.ibmax - else: - ibmax = '' - if options.ibmaxdivn and int( options.ibmaxdivn ) >= 0: - ibmaxdivn = '--bmaxdivn %s' % options.ibmaxdivn - else: - ibmaxdivn = '' - if options.idcv and int( options.idcv ) >= 3: - idcv = '--dcv %s' % options.idcv - else: - idcv = '' - if options.inodc and options.inodc == 'nodc': - inodc = '--nodc' - else: - inodc = '' - if options.inoref and options.inoref == 'noref': - inoref = '--noref' - else: - inoref = '' - if options.iftab and int( options.iftab ) >= 1: - iftab = '--ftabchars %s' % options.iftab - else: - iftab = '' - if options.intoa and options.intoa == 'yes': - intoa = '--ntoa' - else: - intoa = '' - if options.iendian and options.iendian == 'big': - iendian = '--big' - else: - iendian = '--little' - if options.iseed and int( options.iseed ) > 0: - iseed = '--seed %s' % options.iseed - else: - iseed = '' - indexing_cmds = '%s %s %s %s %s %s %s --offrate %s %s %s %s %s %s' % \ - ( iautoB, ipacked, ibmax, ibmaxdivn, idcv, inodc, - inoref, options.ioffrate, iftab, intoa, iendian, - iseed, colorspace ) - except ValueError as e: - # clean up temp dir - if os.path.exists( tmp_index_dir ): - shutil.rmtree( tmp_index_dir ) - stop_err( "Something is wrong with the indexing parameters and the indexing and alignment could not be run. Make sure you don't have any non-numeric values where they should be numeric.\n" + str( e ) ) - ref_file = tempfile.NamedTemporaryFile( dir=tmp_index_dir ) - ref_file_name = ref_file.name - ref_file.close() - os.symlink( options.ref, ref_file_name ) - cmd1 = 'bowtie-build %s -f %s %s' % ( indexing_cmds, ref_file_name, ref_file_name ) - try: - tmp = tempfile.NamedTemporaryFile( dir=tmp_index_dir ).name - with open(tmp, 'w') as tmp_stderr: - returncode = subprocess.call(args=cmd1, shell=True, cwd=tmp_index_dir, stderr=tmp_stderr.fileno()) - if returncode != 0: - # get stderr, allowing for case where it's very large - stderr = '' - buffsize = 1048576 - with open(tmp, 'r') as tmp_stderr: - try: - while True: - stderr += tmp_stderr.read(buffsize) - if not stderr or len(stderr) % buffsize != 0: - break - except OverflowError: - pass - raise Exception(stderr) - except Exception as e: - # clean up temp dir - if os.path.exists( tmp_index_dir ): - shutil.rmtree( tmp_index_dir ) - stop_err( 'Error indexing reference sequence\n' + str( e ) ) - stdout += 'File indexed. ' - else: - ref_file_name = options.ref - # set up aligning and generate aligning command options - # automatically set threads in both cases - tmp_suppressed_file_name = None - tmp_unmapped_file_name = None - if options.suppressHeader == 'true': - suppressHeader = '--sam-nohead' - else: - suppressHeader = '' - if options.maxInsert and int( options.maxInsert ) > 0: - maxInsert = '-X %s' % options.maxInsert - else: - maxInsert = '' - if options.mateOrient: - mateOrient = '--%s' % options.mateOrient - else: - mateOrient = '' - quality_score_encoding = GALAXY_FORMAT_TO_QUALITY_SCORE_ENCODING_ARG.get( options.galaxy_input_format, DEFAULT_ASCII_ENCODING ) - if options.params == 'preSet': - aligning_cmds = '-q %s %s -p %s -S %s %s %s ' % \ - ( maxInsert, mateOrient, options.threads, suppressHeader, colorspace, quality_score_encoding ) - else: - try: - if options.skip and int( options.skip ) > 0: - skip = '-s %s' % options.skip - else: - skip = '' - if options.alignLimit and int( options.alignLimit ) >= 0: - alignLimit = '-u %s' % options.alignLimit - else: - alignLimit = '' - if options.trimH and int( options.trimH ) > 0: - trimH = '-5 %s' % options.trimH - else: - trimH = '' - if options.trimL and int( options.trimL ) > 0: - trimL = '-3 %s' % options.trimL - else: - trimL = '' - if options.maxMismatches and (options.maxMismatches == '0' or options.maxMismatches == '1' or - options.maxMismatches == '2' or options.maxMismatches == '3'): - maxMismatches = '-v %s' % options.maxMismatches - else: - maxMismatches = '' - if options.mismatchSeed and (options.mismatchSeed == '0' or options.mismatchSeed == '1' or - options.mismatchSeed == '2' or options.mismatchSeed == '3'): - mismatchSeed = '-n %s' % options.mismatchSeed - else: - mismatchSeed = '' - if options.mismatchQual and int( options.mismatchQual ) >= 1: - mismatchQual = '-e %s' % options.mismatchQual - else: - mismatchQual = '' - if options.seedLen and int( options.seedLen ) >= 5: - seedLen = '-l %s' % options.seedLen - else: - seedLen = '' - if options.rounding == 'noRound': - rounding = '--nomaqround' - else: - rounding = '' - if options.minInsert and int( options.minInsert ) > 0: - minInsert = '-I %s' % options.minInsert - else: - minInsert = '' - if options.maxAlignAttempt and int( options.maxAlignAttempt ) >= 0: - maxAlignAttempt = '--pairtries %s' % options.maxAlignAttempt - else: - maxAlignAttempt = '' - if options.forwardAlign == 'noForward': - forwardAlign = '--nofw' - else: - forwardAlign = '' - if options.reverseAlign == 'noReverse': - reverseAlign = '--norc' - else: - reverseAlign = '' - if options.maxBacktracks and int( options.maxBacktracks ) > 0 and \ - ( options.mismatchSeed == '2' or options.mismatchSeed == '3' ): - maxBacktracks = '--maxbts %s' % options.maxBacktracks - else: - maxBacktracks = '' - if options.tryHard == 'doTryHard': - tryHard = '-y' - else: - tryHard = '' - if options.valAlign and int( options.valAlign ) >= 0: - valAlign = '-k %s' % options.valAlign - else: - valAlign = '' - if options.allValAligns == 'doAllValAligns': - allValAligns = '-a' - else: - allValAligns = '' - if options.suppressAlign and int( options.suppressAlign ) >= 0: - suppressAlign = '-m %s' % options.suppressAlign - else: - suppressAlign = '' - if options.best == 'doBest': - best = '--best' - else: - best = '' - if options.strata == 'doStrata': - strata = '--strata' - else: - strata = '' - if options.offrate and int( options.offrate ) >= 0: - offrate = '-o %s' % options.offrate - else: - offrate = '' - if options.seed and int( options.seed ) >= 0: - seed = '--seed %s' % options.seed - else: - seed = '' - if options.paired == 'paired': - if options.output_unmapped_reads_l and options.output_unmapped_reads_r: - tmp_unmapped_file = tempfile.NamedTemporaryFile( dir=tmp_index_dir, suffix='.fastq' ) - tmp_unmapped_file_name = tmp_unmapped_file.name - tmp_unmapped_file.close() - output_unmapped_reads = '--un %s' % tmp_unmapped_file_name - else: - output_unmapped_reads = '' - if options.output_suppressed_reads: - tmp_suppressed_file = tempfile.NamedTemporaryFile( dir=tmp_index_dir, suffix='.fastq' ) - tmp_suppressed_file_name = tmp_suppressed_file.name - tmp_suppressed_file.close() - output_suppressed_reads = '--max %s' % tmp_suppressed_file_name - else: - output_suppressed_reads = '' - else: - if options.output_unmapped_reads: - output_unmapped_reads = '--un %s' % options.output_unmapped_reads - else: - output_unmapped_reads = '' - if options.output_suppressed_reads: - output_suppressed_reads = '--max %s' % options.output_suppressed_reads - else: - output_suppressed_reads = '' - snpfrac = '' - if options.snpphred and int( options.snpphred ) >= 0: - snpphred = '--snpphred %s' % options.snpphred - else: - snpphred = '' - if options.snpfrac and float( options.snpfrac ) >= 0: - snpfrac = '--snpfrac %s' % options.snpfrac - if options.keepends and options.keepends == 'doKeepends': - keepends = '--col-keepends' - else: - keepends = '' - if options.output_unmapped_reads_l or options.output_unmapped_reads_r or options.output_unmapped_reads: - aligning_cmds = '-q %s %s -p %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s ' \ - '%s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s 1> /dev/null' % \ - ( maxInsert, mateOrient, options.threads, suppressHeader, - colorspace, skip, alignLimit, trimH, trimL, maxMismatches, - mismatchSeed, mismatchQual, seedLen, rounding, minInsert, - maxAlignAttempt, forwardAlign, reverseAlign, maxBacktracks, - tryHard, valAlign, allValAligns, suppressAlign, best, - strata, offrate, seed, snpphred, snpfrac, keepends, - output_unmapped_reads, output_suppressed_reads, - quality_score_encoding ) - else: - aligning_cmds = '-q %s %s -p %s -S %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s ' \ - '%s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s %s ' % \ - ( maxInsert, mateOrient, options.threads, suppressHeader, - colorspace, skip, alignLimit, trimH, trimL, maxMismatches, - mismatchSeed, mismatchQual, seedLen, rounding, minInsert, - maxAlignAttempt, forwardAlign, reverseAlign, maxBacktracks, - tryHard, valAlign, allValAligns, suppressAlign, best, - strata, offrate, seed, snpphred, snpfrac, keepends, - output_unmapped_reads, output_suppressed_reads, - quality_score_encoding ) - except ValueError as e: - # clean up temp dir - if os.path.exists( tmp_index_dir ): - shutil.rmtree( tmp_index_dir ) - stop_err( 'Something is wrong with the alignment parameters and the alignment could not be run\n' + str( e ) ) - try: - # have to nest try-except in try-finally to handle 2.4 - try: - # prepare actual mapping commands - if options.output != 'XXXX': - print('incorrect option') - if options.paired == 'paired': - # cmd2 = 'bowtie %s %s -1 %s -2 %s > %s | samtools view -b -S > %s' % ( aligning_cmds, ref_file_name, options.input1, options.input2, options.output, options.output ) - cmd2 = 'bowtie %s %s -1 %s -2 %s > %s ' % ( aligning_cmds, ref_file_name, options.input1, options.input2, options.output ) - - else: - # cmd2 = 'bowtie %s %s %s > %s | samtools view -b -S > %s' % ( aligning_cmds, ref_file_name, options.input1, options.output, options.output ) - cmd2 = 'bowtie %s %s %s > %s' % ( aligning_cmds, ref_file_name, options.input1, options.output ) - - else: - if options.paired == 'paired': - cmd2 = 'bowtie %s %s -1 %s -2 %s' % ( aligning_cmds, ref_file_name, options.input1, options.input2 ) - else: - print('correct option') - cmd2 = 'bowtie %s %s %s' % ( aligning_cmds, ref_file_name, options.input1 ) - print(cmd2) - # align - tmp = tempfile.NamedTemporaryFile( dir=tmp_index_dir ).name - with open(tmp, 'w') as tmp_stderr: - returncode = subprocess.call(args=cmd2, shell=True, cwd=tmp_index_dir, stderr=tmp_stderr.fileno()) - # get stderr, allowing for case where it's very large - stderr = '' - buffsize = 1048576 - with open(tmp, 'r') as tmp_stderr: - try: - while True: - stderr += tmp_stderr.read(buffsize) - if not stderr or len(stderr) % buffsize != 0: - break - except OverflowError: - pass - if returncode != 0: - raise Exception(stderr) - elif options.output_mapping_stats is not None: - # Write stderr (containing the mapping statistics) to a named file - with open(options.output_mapping_stats, 'w') as mapping_stats: - mapping_stats.write( stderr ) - # get suppressed and unmapped reads output files in place if appropriate - if options.paired == 'paired' and tmp_suppressed_file_name and \ - options.output_suppressed_reads_l and options.output_suppressed_reads_r: - try: - left = tmp_suppressed_file_name.replace( '.fastq', '_1.fastq' ) - right = tmp_suppressed_file_name.replace( '.fastq', '_1.fastq' ) - shutil.move( left, options.output_suppressed_reads_l ) - shutil.move( right, options.output_suppressed_reads_r ) - except Exception as e: - sys.stdout.write( 'Error producing the suppressed output file.\n' ) - if options.paired == 'paired' and tmp_unmapped_file_name and \ - options.output_unmapped_reads_l and options.output_unmapped_reads_r: - try: - left = tmp_unmapped_file_name.replace( '.fastq', '_1.fastq' ) - right = tmp_unmapped_file_name.replace( '.fastq', '_2.fastq' ) - shutil.move( left, options.output_unmapped_reads_l ) - shutil.move( right, options.output_unmapped_reads_r ) - except Exception as e: - sys.stdout.write( 'Error producing the unmapped output file.\n' ) - # check that there are results in the output file - if options.output != "XXXX" and os.path.getsize( options.output ) == 0: - raise Exception('The output file is empty, there may be an error with your input file or settings.') - except Exception as e: - stop_err( 'Error aligning sequence. ' + str( e ) ) - finally: - # clean up temp dir - if os.path.exists( tmp_index_dir ): - shutil.rmtree( tmp_index_dir ) - stdout += 'Sequence file aligned.\n' - sys.stdout.write( stdout ) - - -if __name__ == "__main__": - __main__() diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 bowtie_rRNA_removal_wrapper/bowtie_rRNA_tRNA_removal_wrapper.xml --- a/bowtie_rRNA_removal_wrapper/bowtie_rRNA_tRNA_removal_wrapper.xml Tue Jul 12 13:40:46 2022 +0000 +++ /dev/null Thu Jan 01 00:00:00 1970 +0000 @@ -1,735 +0,0 @@ - - Remove rRNA and tRNA using Bowtie - - bowtie - samtools - - - bowtie --version - - python '$__tool_directory__/bowtie_rRNA_tRNA_removal_wrapper.py' - ## Set number of threads - --threads="\${GALAXY_SLOTS:-4}" - ## Outputs - --output="${output}" - #if str( $singlePaired.sPaired ) == "single" - #if $output_unmapped_reads_l - --output_unmapped_reads="${output_unmapped_reads_l}" - #end if - #if $output_suppressed_reads_l - --output_suppressed_reads="${output_suppressed_reads_l}" - #end if - --galaxy_input_format="${singlePaired.sInput1.ext}" - #else - #if $output_unmapped_reads_l and $output_unmapped_reads_r - --output_unmapped_reads_l="${output_unmapped_reads_l}" - --output_unmapped_reads_r="${output_unmapped_reads_r}" - #end if - #if $output_suppressed_reads_l and $output_suppressed_reads_l - --output_suppressed_reads_l="${output_suppressed_reads_l}" - --output_suppressed_reads_r="${output_suppressed_reads_r}" - #end if - --galaxy_input_format="${singlePaired.pInput1.ext}" - #end if - ## Inputs - --dataType="solexa" ##this indicates that nucleotide base space is used in the wrapper - --suppressHeader="${suppressHeader}" - --genomeSource="${refGenomeSource.genomeSource}" - #if $refGenomeSource.genomeSource == "history": - ##index already exists - #if $refGenomeSource.ownFile.extension.startswith( 'bowtie_' ): - ##user previously built - --ref="${refGenomeSource.ownFile.extra_files_path}/${refGenomeSource.ownFile.metadata.base_name}" - --do_not_build_index - #else: - ##build index on the fly - --ref="${refGenomeSource.ownFile}" - --indexSettings="${refGenomeSource.indexParams.indexSettings}" - #if $refGenomeSource.indexParams.indexSettings == "indexFull": - --iautoB="${refGenomeSource.indexParams.autoBehavior.autoB}" - #if $refGenomeSource.indexParams.autoBehavior.autoB == "set": - --ipacked="${refGenomeSource.indexParams.autoBehavior.packed}" - --ibmax="${refGenomeSource.indexParams.autoBehavior.bmax}" - --ibmaxdivn="${refGenomeSource.indexParams.autoBehavior.bmaxdivn}" - --idcv="${refGenomeSource.indexParams.autoBehavior.dcv}" - #end if - --inodc="${refGenomeSource.indexParams.nodc}" - --inoref="${refGenomeSource.indexParams.noref}" - --ioffrate="${refGenomeSource.indexParams.offrate}" - --iftab="${refGenomeSource.indexParams.ftab}" - --intoa="${refGenomeSource.indexParams.ntoa}" - --iendian="${refGenomeSource.indexParams.endian}" - --iseed="${refGenomeSource.indexParams.seed}" - #end if - #end if - #else - ##use pre-built index - --ref="${refGenomeSource.index.fields.path}" - #end if - --paired="${singlePaired.sPaired}" - #if $singlePaired.sPaired == "single": - --input1="${singlePaired.sInput1}" - --params="${singlePaired.sParams.sSettingsType}" - #if $singlePaired.sParams.sSettingsType == "full": - --skip="${singlePaired.sParams.sSkip}" - --alignLimit="${singlePaired.sParams.sAlignLimit}" - --trimH="${singlePaired.sParams.sTrimH}" - --trimL="${singlePaired.sParams.sTrimL}" - #if $singlePaired.sParams.alignModeOption.alignMode == 'nMode' - --mismatchSeed="${singlePaired.sParams.alignModeOption.sMismatchSeed}" - --mismatchQual="${singlePaired.sParams.alignModeOption.sMismatchQual}" - --seedLen="${singlePaired.sParams.alignModeOption.sSeedLen}" - --rounding="${singlePaired.sParams.alignModeOption.sRounding}" - #else - --maxMismatches="${singlePaired.sParams.alignModeOption.maxMismatches}" - #end if - --forwardAlign="${singlePaired.sParams.sForwardAlign}" - --reverseAlign="${singlePaired.sParams.sReverseAlign}" - --tryHard="${singlePaired.sParams.sBestOption.sTryHardOption.sTryHard}" - --allValAligns="${singlePaired.sParams.sAllValAlignsOption.sAllValAligns}" - #if $singlePaired.sParams.sAllValAlignsOption.sAllValAligns == "noAllValAligns" - --valAlign="${singlePaired.sParams.sAllValAlignsOption.sValAlign}" - #end if - --suppressAlign="${singlePaired.sParams.sSuppressAlign}" - --best="${singlePaired.sParams.sBestOption.sBest}" - #if $singlePaired.sParams.sBestOption.sBest == "doBest": - --strata="${singlePaired.sParams.sBestOption.sdStrata}" - #if $singlePaired.sParams.sBestOption.sTryHardOption.sTryHard == "noTryHard" - --maxBacktracks="${singlePaired.sParams.sBestOption.sTryHardOption.sdMaxBacktracks}" - #end if - #else: - #if $singlePaired.sParams.sBestOption.sTryHardOption.sTryHard == "noTryHard" - --maxBacktracks="${singlePaired.sParams.sBestOption.sTryHardOption.snMaxBacktracks}" - #end if - #end if - --offrate="${singlePaired.sParams.sOffrate}" - --seed="${singlePaired.sParams.sSeed}" - #end if - #else: - --input1="${singlePaired.pInput1}" - --input2="${singlePaired.pInput2}" - --maxInsert="${singlePaired.pMaxInsert}" - --mateOrient="${singlePaired.pMateOrient}" - --params="${singlePaired.pParams.pSettingsType}" - #if $singlePaired.pParams.pSettingsType == "full": - --skip="${singlePaired.pParams.pSkip}" - --alignLimit="${singlePaired.pParams.pAlignLimit}" - --trimH="${singlePaired.pParams.pTrimH}" - --trimL="${singlePaired.pParams.pTrimL}" - #if $singlePaired.pParams.alignModeOption.alignMode == 'nMode' - --mismatchSeed="${singlePaired.pParams.alignModeOption.pMismatchSeed}" - --mismatchQual="${singlePaired.pParams.alignModeOption.pMismatchQual}" - --seedLen="${singlePaired.pParams.alignModeOption.pSeedLen}" - --rounding="${singlePaired.pParams.alignModeOption.pRounding}" - #else - --maxMismatches="${singlePaired.pParams.alignModeOption.maxMismatches}" - #end if - --minInsert="${singlePaired.pParams.pMinInsert}" - --forwardAlign="${singlePaired.pParams.pForwardAlign}" - --reverseAlign="${singlePaired.pParams.pReverseAlign}" - --tryHard="${singlePaired.pParams.pBestOption.pTryHardOption.pTryHard}" - --allValAligns="${singlePaired.pParams.pAllValAlignsOption.pAllValAligns}" - #if $singlePaired.pParams.pAllValAlignsOption.pAllValAligns == "noAllValAligns" - --valAlign="${singlePaired.pParams.pAllValAlignsOption.pValAlign}" - #end if - --suppressAlign="${singlePaired.pParams.pSuppressAlign}" - --best="${singlePaired.pParams.pBestOption.pBest}" - #if $singlePaired.pParams.pBestOption.pBest == "doBest": - --strata="${singlePaired.pParams.pBestOption.pdStrata}" - #if $singlePaired.pParams.pBestOption.pTryHardOption.pTryHard == "noTryHard" - --maxAlignAttempt="${singlePaired.pParams.pBestOption.pTryHardOption.pMaxAlignAttempt}" - --maxBacktracks="${singlePaired.pParams.pBestOption.pTryHardOption.pdMaxBacktracks}" - #end if - #else: - #if $singlePaired.pParams.pBestOption.pTryHardOption.pTryHard == "noTryHard" - --maxAlignAttempt="${singlePaired.pParams.pBestOption.pTryHardOption.pMaxAlignAttempt}" - --maxBacktracks="${singlePaired.pParams.pBestOption.pTryHardOption.pnMaxBacktracks}" - #end if - #end if - --offrate="${singlePaired.pParams.pOffrate}" - --seed="${singlePaired.pParams.pSeed}" - #end if - #end if - #if $save_mapping_stats - --output_mapping_stats="$mapping_stats" - #end if - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - save_mapped_reads is True - - - - - - - - - - - - - - - - save_mapping_stats is True - - - (( - singlePaired['sPaired'] == "single" and - singlePaired['sParams']['sSettingsType'] == "full" and - singlePaired['sParams']['sMaxFile'] is True - ) or ( - singlePaired['sPaired'] == "paired" and - singlePaired['pParams']['pSettingsType'] == "full" and - singlePaired['pParams']['pMaxFile'] is True - )) - - - - - - - - - - - - - - - - singlePaired['sPaired'] == "paired" - singlePaired['pParams']['pSettingsType'] == "full" - singlePaired['pParams']['pMaxFile'] is True - - - - - - - - - - - - - - - - (( - singlePaired['sPaired'] == "single" and - singlePaired['sParams']['sSettingsType'] == "full" and - singlePaired['sParams']['sUnmappedFile'] is True - ) or ( - singlePaired['sPaired'] == "paired" and - singlePaired['pParams']['pSettingsType'] == "full" and - singlePaired['pParams']['pUnmappedFile'] is True - )) - - - - - - - - - - - - - - - - singlePaired['sPaired'] == "paired" - singlePaired['pParams']['pSettingsType'] == "full" - singlePaired['pParams']['pUnmappedFile'] is True - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -**What it does** - -Bowtie_ is a short read aligner designed to be ultrafast and memory-efficient. It is developed by Ben Langmead and Cole Trapnell. Please cite: Langmead B, Trapnell C, Pop M, Salzberg SL. Ultrafast and memory-efficient alignment of short DNA sequences to the human genome. Genome Biology 10:R25. - -.. _Bowtie: http://bowtie-bio.sourceforge.net/index.shtml - ------- - -**Know what you are doing** - -.. class:: warningmark - -There is no such thing (yet) as an automated gearshift in short read mapping. It is all like stick-shift driving in San Francisco. In other words = running this tool with default parameters will probably not give you meaningful results. A way to deal with this is to **understand** the parameters by carefully reading the `documentation`__ and experimenting. Fortunately, Galaxy makes experimenting easy. - - .. __: http://bowtie-bio.sourceforge.net/index.shtml - ------- - -**Input formats** - -Bowtie accepts files in Sanger FASTQ format. Use the FASTQ Groomer to prepare your files. - ------- - -**A Note on Built-in Reference Genomes** - -The default variant for all genomes is "Full", defined as all primary chromosomes (or scaffolds/contigs) including mitochondrial plus associated unmapped, plasmid, and other segments. When only one version of a genome is available in this tool, it represents the default "Full" variant. Some genomes will have more than one variant available. The "Canonical Male" or sometimes simply "Canonical" variant contains the primary chromosomes for a genome. For example a human "Canonical" variant contains chr1-chr22, chrX, chrY, and chrM. The "Canonical Female" variant contains the primary chromosomes excluding chrY. - ------- - -**Outputs** - -The output is in SAM format, and has the following columns:: - - Column Description - -------- -------------------------------------------------------- - 1 QNAME Query (pair) NAME - 2 FLAG bitwise FLAG - 3 RNAME Reference sequence NAME - 4 POS 1-based leftmost POSition/coordinate of clipped sequence - 5 MAPQ MAPping Quality (Phred-scaled) - 6 CIGAR extended CIGAR string - 7 MRNM Mate Reference sequence NaMe ('=' if same as RNAME) - 8 MPOS 1-based Mate POSition - 9 ISIZE Inferred insert SIZE - 10 SEQ query SEQuence on the same strand as the reference - 11 QUAL query QUALity (ASCII-33 gives the Phred base quality) - 12 OPT variable OPTional fields in the format TAG:VTYPE:VALUE - -The flags are as follows:: - - Flag Description - ------ ------------------------------------- - 0x0001 the read is paired in sequencing - 0x0002 the read is mapped in a proper pair - 0x0004 the query sequence itself is unmapped - 0x0008 the mate is unmapped - 0x0010 strand of the query (1 for reverse) - 0x0020 strand of the mate - 0x0040 the read is the first read in a pair - 0x0080 the read is the second read in a pair - 0x0100 the alignment is not primary - -It looks like this (scroll sideways to see the entire example):: - - QNAME FLAG RNAME POS MAPQ CIAGR MRNM MPOS ISIZE SEQ QUAL OPT - HWI-EAS91_1_30788AAXX:1:1:1761:343 4 * 0 0 * * 0 0 AAAAAAANNAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAACNNANNGAGTNGNNNNNNNGCTTCCCACAGNNCTGG hhhhhhh;;hhhhhhhhhhh^hOhhhhghhhfhhhgh;;h;;hhhh;h;;;;;;;hhhhhhghhhh;;Phhh - HWI-EAS91_1_30788AAXX:1:1:1578:331 4 * 0 0 * * 0 0 GTATAGANNAATAAGAAAAAAAAAAATGAAGACTTTCNNANNTCTGNANNNNNNNTCTTTTTTCAGNNGTAG hhhhhhh;;hhhhhhhhhhhhhhhhhhhhhhhhhhhh;;h;;hhhh;h;;;;;;;hhhhhhhhhhh;;hhVh - -------- - -**Bowtie settings** - -All of the options have a default value. You can change any of them. Most of the options in Bowtie have been implemented here. - ------- - -**Bowtie parameter list** - -This is an exhaustive list of Bowtie options: - -For indexing (bowtie-build):: - - -a No auto behavior. Disable the default behavior where bowtie automatically - selects values for --bmax/--bmaxdivn/--dcv/--packed parameters according - to the memory available. [off] - --packed Packing. Use a packed representation for DNA strings. [auto] - --bmax INT Suffix maximum. The maximum number of suffixes allowed in a block. [auto] - --bmaxdivn INT Suffix maximum fraction. The maximum number of suffixes allowed in a block - expressed as a fraction of the length of the reference. [4] - --dcv INT Difference-cover sample. Use INT as the period for the difference-cover - sample. [1024] - --nodc INT No difference-cover sample. Disable the difference-cover sample. [off] - -r No reference indexes. Do not build the NAME.3.ebwt and NAME.4.ebwt portions - of the index. Used only for paired-end alignment. [off] - -o Offrate. How many Burrows-Wheeler rows get marked by the indexer. The - indexer will mark every 2^INT rows. The marked rows correspond to rows on - the genome. [5] - -t INT The ftab lookup table used to calculate an initial Burrows-Wheeler range - with respect to the first INT characters of the query. Ftab size is 4^(INT+1) - bytes. [10] - --ntoa N conversion. Convert Ns to As before building the index. Otherwise, Ns are - simply excluded from the index and Bowtie will not find alignments that - overlap them. [off] - --big Endianness. Endianness to use when serializing integers to the index file. [off] - --little Endianness. [--little] - --seed INT Random seed. Use INT as the seed for the pseudo-random number generator. [off] - -For aligning (bowtie):: - - -s INT Skip. Do not align the first INT reads or pairs in the input. [off] - -u INT Align limit. Only align the first INT reads/pairs from the input. [no limit] - -5 INT High-quality trim. Trim INT bases from the high-quality (left) end of each - read before alignment. [0] - -3 INT Low-quality trim. Trim INT bases from the low-quality (right) end of each - read before alignment. [0] - -n INT Mismatch seed. Maximum number of mismatches permitted in the seed (defined - with seed length option). Can be 0, 1, 2, or 3. [2] - -e INT Mismatch quality. Maximum permitted total of quality values at mismatched - read positions. Bowtie rounds quality values to the nearest 10 and saturates - at 30. [70] - -l INT Seed length. The number of bases on the high-quality end of the read to - which the -n ceiling applies. Must be at least 5. [28] - --nomaqround Suppress Maq rounding. Values are internally rounded to the nearest 10 and - saturate at 30. This options turns off that rounding. [off] - -v INT Maq- or SOAP-like alignment policy. This option turns off the default - Maq-like alignment policy in favor of a SOAP-like one. End-to-end alignments - with at most INT mismatches. [off] - -I INT Minimum insert. The minimum insert size for valid paired-end alignments. - Does checking on untrimmed reads if -5 or -3 is used. [0] - -X INT Maximum insert. The maximum insert size for valid paired-end alignments. - Does checking on untrimmed reads if -5 or -3 is used. [250] - --fr Mate orientation. The upstream/downstream mate orientations for a valid - paired-end alignment against the forward reference strand. [--fr] - --rf Mate orientation. [off] - --ff Mate orientation. [off] - --pairtries INT Maximum alignment attempts for paired-end data. [100] - --nofw No forward aligning. Choosing this option means that Bowtie will not attempt - to align against the forward reference strand. [off] - --norc No reverse-complement aligning. Setting this will mean that Bowtie will not - attempt to align against the reverse-complement reference strand. [off] - --un FILENAME Write all reads that could not be aligned to file [off] - --max FILENAME Write all reads with a number of valid alignments exceeding the limit - set with the -m option to file [off] - --maxbts INT Maximum backtracks. The maximum number of backtracks permitted when aligning - a read in -n 2 or -n 3 mode. [125 without --best] [800 with --best] - -y Try hard. Try as hard as possible to find valid alignments when they exist, - including paired-end alignments. [off] - --chunkmbs INT Thread memory. The number of megabytes of memory a given thread is given to - store path descriptors in --best mode. [32] - -k INT Valid alignments. The number of valid alignments per read or pair. [off] - -a All valid alignments. Choosing this means that all valid alignments per read - or pair will be reported. [off] - -m INT Suppress alignments. Suppress all alignments for a particular read or pair - if more than INT reportable alignments exist for it. [no limit] - --best Best mode. Make Bowtie guarantee that reported singleton alignments are - "best" in terms of stratum (the number of mismatches) and quality values at - mismatched position. [off] - --strata Best strata. When running in best mode, report alignments that fall into the - best stratum if there are ones falling into more than one. [off] - -o INT Offrate override. Override the offrate of the index with INT. Some row - markings are discarded when index read into memory. INT must be greater than - the value used to build the index (default: 5). [off] - --seed INT Random seed. Use INT as the seed for the pseudo-random number generator. [off] - --snpphred INT Use INT as the SNP penalty for decoding colorspace alignments. True ratio of - SNPs per base in the subject genome. [see --snpfrac] - --snpfrac DEC Use DEC as the estimated ratio of SNPs per base when decoding colorspace - alignments. [0.001] - --col-keepends Keep the extreme-end nucleotides and qualities when decoding colorspace - alignments. [off] - - - - 10.1186/gb-2009-10-3-r25 - - diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 bowtie_rRNA_removal_wrapper/test-data/chr9_100000bases.fa --- a/bowtie_rRNA_removal_wrapper/test-data/chr9_100000bases.fa Tue Jul 12 13:40:46 2022 +0000 +++ /dev/null Thu Jan 01 00:00:00 1970 +0000 @@ -1,100000 +0,0 @@ ->9 dna:chromosome chromosome:GRCh38:9:1:138394717:1 REF -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN -NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN 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-TAGTAAAAAATTAAGAGATTTCAGTTATCCTATAATTTATATACTCTTCTCATGAAACTT -TTAAAATAAGTCTTGGATATGATTAAGAGCTTTGACTTAAATATTACTATCAATCAAATT -TCCTAGCCTGGAATTAATAAGTAGTAGAAATCACTAGCGTACTAGAATTGTACGAAGGAT -TTAGATAAACTTAAGAATATAAATGGTTCTCATACTTGTCAGTAGTCTGTGGAATACCTT -GAAATACTATCATATTTAATAGTTTTTAAATACCTTCTACTAGCAACGTTGTATTTTTTA -AGGATTATGTTCTTATAAGTATTAAACTGTTACAAATATAAATTTGTGTCTATAAAAACT -AAGCTGTCAAATTAAGCATATTGATATTGTCAATATGTTTATAATTTATTAATTATATTT -GCCATAATTCTTTTTTTGGTTATTGGCAAAGTTGCTAAAAACAACTTGGTAGTAGACTAA -CTTAAACTGATAAAATTATGTATTTAACATATTTTTTTCCCTGAGAACAGAGAGAAGATT -GAAATTATTCAAAGAAACAAAACAACTAAGTCTGACAAATTATTTGGAGATGTAAATCTA -GCATATTATCTCAATTTGGCAAAATTTCTCTTATATCTAGCATTGCTCTAGGATTTCTGC -TATATATAAAACTAATTTTTCCTGATACATTTATATATATATAATCACCAGACCTAAAAG -AAACATAGTCAAACGCAATACTTTTAACTCGGAAGTCAAGAATAAGCAAAGCTGAAAATT -AAAGGATGGGAAAAGATCAAATTGAGTCTAGTTTTCTCCTTCTCTAATTCATTTCATCTA -TGCATCCCTTGTAATTCCCTAGCTTAAAATCCTTCATACAACTCCCGAATATTAGCACAG -CATATTAGGCCCTCTGTGATCTGGCTACATAATCTGGCCCTCACCGTCACACCTGTCACT -ACTTTTCTACATATAATTACACTCTAGCCAAACTAAACTACTGGCCATTCCCTAGCTACA -CACAGTAGCTCTTTTTGCCTTTGCACTTTTAGATATGGTGTTCTTATTGCCTGAATAACC -TCTACACCAATTTAGTTTATCCACTTGTGTCTTTCTATATCCATCTTTGAATCTCCCTAT -AGTGCCTATCAAATAATAAGCATTGTAAATATATGCTAAAAATAATGAACTGAACTTGTC -TTACCACATTAACCACATACTACCTTCTTGCATGCTTTTGAACACTGTGTCCATCCCTTA diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 bowtie_rRNA_removal_wrapper/test-data/lesschr9.fastq --- a/bowtie_rRNA_removal_wrapper/test-data/lesschr9.fastq Tue Jul 12 13:40:46 2022 +0000 +++ /dev/null Thu Jan 01 00:00:00 1970 +0000 @@ -1,39844 +0,0 @@ -@NS500289:1032:HMFHFBGXK:2:11101:14792:13153 1:N:0:ATTACTCG -CCGCCGAGGGCGCACCACCGGCCCGTCTCAC -+ -AAEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEEE6E -@NS500289:1032:HMFHFBGXK:2:11101:21043:15993 1:N:0:ATTACTCG -CCCCCGCGGGGGCGCGCCGGCGTGGGGGGGCCGGGGC -+ -AAEEEEEAAAEEEEEE/AEE/EEEEE6E66/A/A//E -@NS500289:1032:HMFHFBGXK:2:11101:20421:20097 1:N:0:ATTACTCG -CTGTCCACCTTCCAGCAGATGTGGATCAGC -+ -AA/EAEEEEEEEEE6E -Load() >>> MyApp(title='Textual') -Mount() >>> MyApp(title='Textual Application') -Mount() >>> DockView(name='DockView#1') -Mount() >>> DockView(name='DockView#2') -Mount() >>> Header('') -Mount() >>> DockView(name='DockView#3') -view.forwarded Key(key='x') -Key(key='x') >>> MyApp(title='Textual Application') -ACTION MyApp(title='Textual Application') bang -CLOSED MyApp(title='Textual Application') -PROCESS END -CLOSED DockView(name='DockView#3') -CLOSED Footer(keys=[]) -CLOSED Placeholder(name='Placeholder#2') -CLOSED DockView(name='DockView#1') -CLOSED Placeholder(name='Placeholder#3') -CLOSED Header('Textual Application') diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 bowtie_rRNA_removal_wrapper/tool-data/bowtie_rRNA_indexes.loc.sample --- a/bowtie_rRNA_removal_wrapper/tool-data/bowtie_rRNA_indexes.loc.sample Tue Jul 12 13:40:46 2022 +0000 +++ /dev/null Thu Jan 01 00:00:00 1970 +0000 @@ -1,12 +0,0 @@ -sacCer9rRNA sacCer9 Saccharomyces cerevisiae rRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/sacCer_9/sacCer_9_rRNA -sacCer9tRNA sacCer9 Saccharomyces cerevisiae tRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/sacCer_9/sacCer_9_tRNA -hg38rRNA hg38 Homo sapiens rRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/homo_sapiens_hg38/homo_sapiens_hg38_rRNA -hg38tRNA hg38 Homo sapiens tRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/homo_sapiens_hg38/homo_sapiens_hg38_tRNA -e_colirRNA e_coli Escherichia coli rRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/E_coli_K12_MG1655/E_coli_K12_MG1655_rRNA -e_colitRNA e_coli Escherichia coli tRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/E_coli_K12_MG1655/E_coli_K12_MG1655_tRNA -dm6rRNA dm6 Drosophila melanogater rRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/drosophila_melanogater_dm6/drosophila_melanogater_dm6_rRNA -dm6tRNA dm6 Drosophila melanogater tRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/drosophila_melanogater_dm6/drosophila_melanogater_dm6_tRNA -m28rRNA m28 Mus musculus rRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/mus_musculus_m28/mus_musculus_m28_rRNA -m28tRNA m28 Mus musculus tRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/mus_musculus_m28/mus_musculus_m28_tRNA -araThalrRNA araThal Arabidopsis thaliana (TAIR10) rRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/Arabidopsis/Arabidopsis_rRNA -araThaltRNA araThal Arabidopsis thaliana (TAIR10) tRNA /mnt/data/indices/bowtie/ncRNA/Arabidopsis/Arabidopsis_tRNA \ No newline at end of file diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 bowtie_rRNA_removal_wrapper/tool_data_table_conf.xml.sample --- a/bowtie_rRNA_removal_wrapper/tool_data_table_conf.xml.sample Tue Jul 12 13:40:46 2022 +0000 +++ /dev/null Thu Jan 01 00:00:00 1970 +0000 @@ -1,8 +0,0 @@ - - - - - value, dbkey, name, path - -
-
diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/bam_to_sqlite.py --- /dev/null Thu Jan 01 00:00:00 1970 +0000 +++ b/trips_bam_to_sqlite/bam_to_sqlite.py Thu Nov 03 13:22:00 2022 +0000 @@ -0,0 +1,585 @@ +import sys +import pysam +import operator +import os +import time +import sqlite3 +from sqlitedict import SqliteDict + +def tran_to_genome(tran, pos, transcriptome_info_dict): + #print ("tran",list(transcriptome_info_dict)) + traninfo = transcriptome_info_dict[tran] + chrom = traninfo["chrom"] + strand = traninfo["strand"] + exons = sorted(traninfo["exons"]) + #print exons + if strand == "+": + exon_start = 0 + for tup in exons: + exon_start = tup[0] + exonlen = tup[1] - tup[0] + if pos > exonlen: + pos = (pos - exonlen)-1 + else: + break + genomic_pos = (exon_start+pos)-1 + elif strand == "-": + exon_start = 0 + for tup in exons[::-1]: + exon_start = tup[1] + exonlen = tup[1] - tup[0] + if pos > exonlen: + pos = (pos - exonlen)-1 + else: + break + genomic_pos = (exon_start-pos)+1 + return (chrom, genomic_pos) + + +# Takes a dictionary with a readname as key and a list of lists as value, each sub list has consists of two elements a transcript and the position the read aligns to in the transcript +# This function will count the number of genes that the transcripts correspond to and if less than or equal to 3 will add the relevant value to transcript_counts_dict +def processor(process_chunk, master_read_dict, transcriptome_info_dict,master_dict,readseq, unambig_read_length_dict): + readlen = len(readseq) + ambiguously_mapped_reads = 0 + #get the read name + read = list(process_chunk)[0] + + read_list = process_chunk[read] # a list of lists of all transcripts the read aligns to and the positions + #used to store different genomic poistions + genomic_positions = [] + + #This section is just to get the different genomic positions the read aligns to + + for listname in process_chunk[read]: + + tran = listname[0].replace("-","_").replace("(","").replace(")","") + + pos = int(listname[1]) + genomic_pos = tran_to_genome(tran, pos, transcriptome_info_dict) + #print ("genomic pos",genomic_pos) + if genomic_pos not in genomic_positions: + genomic_positions.append(genomic_pos) + + #If the read maps unambiguously + if len(genomic_positions) == 1: + if readlen not in unambig_read_length_dict: + unambig_read_length_dict[readlen] = 0 + unambig_read_length_dict[readlen] += 1 + #assume this read aligns to a noncoding position, if we find that it does align to a coding region change this to True + coding=False + + # For each transcript this read alings to + for listname in process_chunk[read]: + #get the transcript name + tran = listname[0].replace("-","_").replace("(","").replace(")","") + #If we haven't come across this transcript already then add to master_read_dict + if tran not in master_read_dict: + master_read_dict[tran] = {"ambig":{}, "unambig":{}, "mismatches":{}, "seq":{}} + #get the raw unedited positon, and read tags + pos = int(listname[1]) + read_tags = listname[2] + #If there is mismatches in this line, then modify the postion and readlen (if mismatches at start or end) and add mismatches to dictionary + nm_tag = 0 + + for tag in read_tags: + if tag[0] == "NM": + nm_tag = int(tag[1]) + if nm_tag > 0: + md_tag = "" + for tag in read_tags: + if tag[0] == "MD": + md_tag = tag[1] + pos_modifier, readlen_modifier,mismatches = get_mismatch_pos(md_tag,pos,readlen,master_read_dict,tran,readseq) + # Count the mismatches (we only do this for unambiguous) + for mismatch in mismatches: + #Ignore mismatches appearing in the first position (due to non templated addition) + if mismatch != 0: + char = mismatches[mismatch] + mismatch_pos = pos + mismatch + if mismatch_pos not in master_read_dict[tran]["seq"]: + master_read_dict[tran]["seq"][mismatch_pos] = {} + if char not in master_read_dict[tran]["seq"][mismatch_pos]: + master_read_dict[tran]["seq"][mismatch_pos][char] = 0 + master_read_dict[tran]["seq"][mismatch_pos][char] += 1 + # apply the modifiers + #pos = pos+pos_modifier + #readlen = readlen - readlen_modifier + + + try: + cds_start = transcriptome_info_dict[tran]["cds_start"] + cds_stop = transcriptome_info_dict[tran]["cds_stop"] + + if pos >= cds_start and pos <= cds_stop: + coding=True + except: + pass + + + if readlen in master_read_dict[tran]["unambig"]: + if pos in master_read_dict[tran]["unambig"][readlen]: + master_read_dict[tran]["unambig"][readlen][pos] += 1 + else: + master_read_dict[tran]["unambig"][readlen][pos] = 1 + else: + master_read_dict[tran]["unambig"][readlen] = {pos:1} + + if coding == True: + master_dict["unambiguous_coding_count"] += 1 + elif coding == False: + master_dict["unambiguous_non_coding_count"] += 1 + + else: + ambiguously_mapped_reads += 1 + for listname in process_chunk[read]: + tran = listname[0].replace("-","_").replace("(","").replace(")","") + if tran not in master_read_dict: + master_read_dict[tran] = {"ambig":{}, "unambig":{}, "mismatches":{}, "seq":{}} + pos = int(listname[1]) + read_tags = listname[2] + nm_tag = 0 + for tag in read_tags: + if tag[0] == "NM": + nm_tag = int(tag[1]) + if nm_tag > 0: + md_tag = "" + for tag in read_tags: + if tag[0] == "MD": + md_tag = tag[1] + pos_modifier, readlen_modifier,mismatches = get_mismatch_pos(md_tag,pos,readlen,master_read_dict,tran,readseq) + # apply the modifiers + #pos = pos+pos_modifier + #readlen = readlen - readlen_modifier + if readlen in master_read_dict[tran]["ambig"]: + if pos in master_read_dict[tran]["ambig"][readlen]: + master_read_dict[tran]["ambig"][readlen][pos] += 1 + else: + master_read_dict[tran]["ambig"][readlen][pos] = 1 + else: + master_read_dict[tran]["ambig"][readlen] = {pos:1} + return ambiguously_mapped_reads + + +def get_mismatch_pos(md_tag,pos,readlen,master_read_dict,tran,readseq): + nucs = ["A","T","G","C"] + mismatches = {} + total_so_far = 0 + prev_char = "" + for char in md_tag: + if char in nucs: + if prev_char != "": + total_so_far += int(prev_char) + prev_char = "" + mismatches[total_so_far+len(mismatches)] = (readseq[total_so_far+len(mismatches)]) + else: + if char != "^" and char != "N": + if prev_char == "": + prev_char = char + else: + total_so_far += int(prev_char+char) + prev_char = "" + readlen_modifier = 0 + pos_modifier = 0 + five_ok = False + three_ok = False + while five_ok == False: + for i in range(0,readlen): + if i in mismatches: + pos_modifier += 1 + readlen_modifier += 1 + else: + five_ok = True + break + five_ok = True + + + while three_ok == False: + for i in range(readlen-1,0,-1): + if i in mismatches: + readlen_modifier += 1 + else: + three_ok = True + break + three_ok = True + + + return (pos_modifier, readlen_modifier, mismatches) + + + +def process_bam(bam_filepath, transcriptome_info_dict_path,outputfile): + desc = "NULL" + start_time = time.time() + study_dict ={} + nuc_count_dict = {"mapped":{},"unmapped":{}} + dinuc_count_dict = {} + threeprime_nuc_count_dict = {"mapped":{},"unmapped":{}} + read_length_dict = {} + unambig_read_length_dict = {} + unmapped_dict = {} + master_dict = {"unambiguous_non_coding_count":0,"unambiguous_coding_count":0,"current_dir":os.getcwd()} + + transcriptome_info_dict = {} + connection = sqlite3.connect(transcriptome_info_dict_path) + cursor = connection.cursor() + cursor.execute("SELECT transcript,cds_start,cds_stop,length,strand,chrom,tran_type from transcripts;") + result = cursor.fetchall() + for row in result: + transcriptome_info_dict[str(row[0])] = {"cds_start":row[1],"cds_stop":row[2],"length":row[3],"strand":row[4],"chrom":row[5],"exons":[],"tran_type":row[6]} + #print list(transcriptome_info_dict)[:10] + + cursor.execute("SELECT * from exons;") + result = cursor.fetchall() + for row in result: + transcriptome_info_dict[str(row[0])]["exons"].append((row[1],row[2])) + + #it might be the case that there are no multimappers, so set this to 0 first to avoid an error, it will be overwritten later if there is multimappers + multimappers = 0 + unmapped_reads = 0 + unambiguous_coding_count = 0 + unambiguous_non_coding_count = 0 + trip_periodicity_reads = 0 + + final_offsets = {"fiveprime":{"offsets":{}, "read_scores":{}}, "threeprime":{"offsets":{}, "read_scores":{}}} + master_read_dict = {} + prev_seq = "" + process_chunk = {"read_name":[["placeholder_tran","1","28"]]} + mapped_reads = 0 + ambiguously_mapped_reads = 0 + master_trip_dict = {"fiveprime":{}, "threeprime":{}} + master_offset_dict = {"fiveprime":{}, "threeprime":{}} + master_metagene_stop_dict = {"fiveprime":{}, "threeprime":{}} + + + os.system(f'samtools sort -n {bam_filepath} -o {bam_filepath}_n_sorted.bam 2> /dev/null') + + pysam.set_verbosity(0) + infile = pysam.Samfile(f"{bam_filepath}_n_sorted.bam", "rb") + header = infile.header["HD"] + + unsorted = False + if "SO" in header: + print("Sorting order: "+header["SO"]) + if header["SO"] != "queryname": + print("Sorting order is not queryname") + unsorted = True + else: + unsorted = True + if unsorted == True: + print ("ERROR: Bam file appears to be unsorted or not sorted by read name. To sort by read name use the command: samtools sort -n input.bam output.bam") + print (header,bam_filepath) + sys.exit() + total_bam_lines = 0 + all_ref_ids = infile.references + + for read in infile.fetch(until_eof=True): + total_bam_lines += 1 + if not read.is_unmapped: + ref = read.reference_id + tran = (all_ref_ids[ref]).split(".")[0] + mapped_reads += 1 + if mapped_reads%1000000 == 0: + print ("{} reads parsed at {}".format(mapped_reads,(time.time()-start_time))) + pos = read.reference_start + readname = read.query_name + read_tags = read.tags + if readname == list(process_chunk)[0]: + process_chunk[readname].append([tran,pos,read_tags]) + #if the current read is different from previous reads send 'process_chunk' to the 'processor' function, then start 'process_chunk' over using current read + else: + if list(process_chunk)[0] != "read_name": + + #At this point we work out readseq, we do this for multiple reasons, firstly so we don't count the sequence from a read multiple times, just because + # it aligns multiple times and secondly we only call read.seq once (read.seq is computationally expensive) + seq = read.seq + readlen = len(seq) + + # Note if a read maps ambiguously it will still be counted toward the read length distribution (however it will only be counted once, not each time it maps) + if readlen not in read_length_dict: + read_length_dict[readlen] = 0 + read_length_dict[readlen] += 1 + + if readlen not in nuc_count_dict["mapped"]: + nuc_count_dict["mapped"][readlen] = {} + if readlen not in threeprime_nuc_count_dict["mapped"]: + threeprime_nuc_count_dict["mapped"][readlen] = {} + if readlen not in dinuc_count_dict: + dinuc_count_dict[readlen] = {"AA":0, "TA":0, "GA":0, "CA":0, + "AT":0, "TT":0, "GT":0, "CT":0, + "AG":0, "TG":0, "GG":0, "CG":0, + "AC":0, "TC":0, "GC":0, "CC":0} + + for i in range(0,len(seq)): + if i not in nuc_count_dict["mapped"][readlen]: + nuc_count_dict["mapped"][readlen][i] = {"A":0, "T":0, "G":0, "C":0, "N":0} + nuc_count_dict["mapped"][readlen][i][seq[i]] += 1 + + for i in range(0,len(seq)): + try: + dinuc_count_dict[readlen][seq[i:i+2]] += 1 + except: + pass + + for i in range(len(seq),0,-1): + dist = i-len(seq) + if dist not in threeprime_nuc_count_dict["mapped"][readlen]: + threeprime_nuc_count_dict["mapped"][readlen][dist] = {"A":0, "T":0, "G":0, "C":0, "N":0} + threeprime_nuc_count_dict["mapped"][readlen][dist][seq[dist]] += 1 + ambiguously_mapped_reads += processor(process_chunk, master_read_dict, transcriptome_info_dict,master_dict,prev_seq, unambig_read_length_dict) + process_chunk = {readname:[[tran, pos, read_tags]]} + prev_seq = read.seq + else: + unmapped_reads += 1 + + # Add this unmapped read to unmapped_dict so we can see what the most frequent unmapped read is. + seq = read.seq + readlen = len(seq) + if seq in unmapped_dict: + unmapped_dict[seq] += 1 + else: + unmapped_dict[seq] = 1 + + # Populate the nuc_count_dict with this unmapped read + if readlen not in nuc_count_dict["unmapped"]: + nuc_count_dict["unmapped"][readlen] = {} + for i in range(0,len(seq)): + if i not in nuc_count_dict["unmapped"][readlen]: + nuc_count_dict["unmapped"][readlen][i] = {"A":0, "T":0, "G":0, "C":0, "N":0} + nuc_count_dict["unmapped"][readlen][i][seq[i]] += 1 + + if readlen not in threeprime_nuc_count_dict["unmapped"]: + threeprime_nuc_count_dict["unmapped"][readlen] = {} + + for i in range(len(seq),0,-1): + dist = i-len(seq) + if dist not in threeprime_nuc_count_dict["unmapped"][readlen]: + threeprime_nuc_count_dict["unmapped"][readlen][dist] = {"A":0, "T":0, "G":0, "C":0, "N":0} + threeprime_nuc_count_dict["unmapped"][readlen][dist][seq[dist]] += 1 + + #add stats about mapped/unmapped reads to file dict which will be used for the final report + master_dict["total_bam_lines"] = total_bam_lines + master_dict["mapped_reads"] = mapped_reads + master_dict["unmapped_reads"] = unmapped_reads + master_dict["ambiguously_mapped_reads"] = ambiguously_mapped_reads + + if "read_name" in master_read_dict: + del master_read_dict["read_name"] + print ("BAM file processed") + print ("Creating metagenes, triplet periodicity plots, etc.") + + for tran in master_read_dict: + try: + cds_start = int(0 if transcriptome_info_dict[tran]["cds_start"] is None else transcriptome_info_dict[tran]["cds_start"]) + cds_stop = int(0 if transcriptome_info_dict[tran]["cds_stop"] is None else transcriptome_info_dict[tran]["cds_stop"]) + # print(tran, type(cds_start)) + except: + print("Exception: ", tran) + continue + + tranlen = transcriptome_info_dict[tran]["length"] + #Use this to discard transcripts with no 5' leader or 3' trailer + if cds_start > 1 and cds_stop < tranlen and transcriptome_info_dict[tran]["tran_type"] == 1: + for primetype in ["fiveprime", "threeprime"]: + # Create the triplet periodicity and metainfo plots based on both the 5' and 3' ends of reads + for readlength in master_read_dict[tran]["unambig"]: + #print "readlength", readlength + # for each fiveprime postion for this readlength within this transcript + for raw_pos in master_read_dict[tran]["unambig"][readlength]: + #print "raw pos", raw_pos + trip_periodicity_reads += 1 + if primetype == "fiveprime": + # get the five prime postion minus the cds start postion + real_pos = raw_pos-cds_start + rel_stop_pos = raw_pos-cds_stop + elif primetype == "threeprime": + real_pos = (raw_pos+readlength)-cds_start + rel_stop_pos = (raw_pos+readlength)-cds_stop + #get the readcount at the raw postion + readcount = master_read_dict[tran]["unambig"][readlength][raw_pos] + #print "readcount", readcount + frame = (real_pos%3) + if real_pos >= cds_start and real_pos <= cds_stop: + if readlength in master_trip_dict[primetype]: + master_trip_dict[primetype][readlength][str(frame)] += readcount + else: + master_trip_dict[primetype][readlength]= {"0":0.0,"1":0.0,"2":0.0} + master_trip_dict[primetype][readlength][str(frame)] += readcount + # now populate offset dict with the 'real_positions' upstream of cds_start, these will be used for metainfo dict + if real_pos > (-600) and real_pos < (601): + if readlength in master_offset_dict[primetype]: + if real_pos in master_offset_dict[primetype][readlength]: + #print "real pos in offset dict" + master_offset_dict[primetype][readlength][real_pos] += readcount + else: + #print "real pos not in offset dict" + master_offset_dict[primetype][readlength][real_pos] = readcount + else: + #initiliase with zero to avoid missing neighbours below + #print "initialising with zeros" + master_offset_dict[primetype][readlength]= {} + for i in range(-600,601): + master_offset_dict[primetype][readlength][i] = 0 + master_offset_dict[primetype][readlength][real_pos] += readcount + + # now populate offset dict with the 'real_positions' upstream of cds_start, these will be used for metainfo dict + if rel_stop_pos > (-600) and rel_stop_pos < (601): + if readlength in master_metagene_stop_dict[primetype]: + if rel_stop_pos in master_metagene_stop_dict[primetype][readlength]: + master_metagene_stop_dict[primetype][readlength][rel_stop_pos] += readcount + else: + master_metagene_stop_dict[primetype][readlength][rel_stop_pos] = readcount + else: + #initiliase with zero to avoid missing neighbours below + master_metagene_stop_dict[primetype][readlength] = {} + for i in range(-600,601): + master_metagene_stop_dict[primetype][readlength][i] = 0 + master_metagene_stop_dict[primetype][readlength][rel_stop_pos] += readcount + + # master trip dict is now made up of readlengths with 3 frames and a count associated with each frame + # create a 'score' for each readlength by putting the max frame count over the second highest frame count + for primetype in ["fiveprime", "threeprime"]: + for subreadlength in master_trip_dict[primetype]: + maxcount = 0 + secondmaxcount = 0 + for frame in master_trip_dict[primetype][subreadlength]: + if master_trip_dict[primetype][subreadlength][frame] > maxcount: + maxcount = master_trip_dict[primetype][subreadlength][frame] + for frame in master_trip_dict[primetype][subreadlength]: + if master_trip_dict[primetype][subreadlength][frame] > secondmaxcount and master_trip_dict[primetype][subreadlength][frame] != maxcount: + secondmaxcount = master_trip_dict[primetype][subreadlength][frame] + # a perfect score would be 0 meaning there is only a single peak, the worst score would be 1 meaning two highest peaks are the same height + master_trip_dict[primetype][subreadlength]["score"] = float(secondmaxcount)/float(maxcount) + #This part is to determine what offsets to give each read length + print ("Calculating offsets") + for primetype in ["fiveprime", "threeprime"]: + for readlen in master_offset_dict[primetype]: + accepted_len = False + max_relative_pos = 0 + max_relative_count = 0 + for relative_pos in master_offset_dict[primetype][readlen]: + # This line is to ensure we don't choose an offset greater than the readlength (in cases of a large peak far up/downstream) + if abs(relative_pos) < 10 or abs(relative_pos) > (readlen-10): + continue + if master_offset_dict[primetype][readlen][relative_pos] > max_relative_count: + max_relative_pos = relative_pos + max_relative_count = master_offset_dict[primetype][readlen][relative_pos] + #print "for readlen {} the max_relative pos is {}".format(readlen, max_relative_pos) + if primetype == "fiveprime": + # -3 to get from p-site to a-site, +1 to account for 1 based co-ordinates, resulting in -2 overall + final_offsets[primetype]["offsets"][readlen] = abs(max_relative_pos-2) + elif primetype == "threeprime": + # +3 to get from p-site to a-site, -1 to account for 1 based co-ordinates, resulting in +2 overall + final_offsets[primetype]["offsets"][readlen] = (max_relative_pos*(-1))+2 + #If there are no reads in CDS regions for a specific length, it may not be present in master_trip_dict + if readlen in master_trip_dict[primetype]: + final_offsets[primetype]["read_scores"][readlen] = master_trip_dict[primetype][readlen]["score"] + else: + final_offsets[primetype]["read_scores"][readlen] = 0.0 + + + master_read_dict["unmapped_reads"] = unmapped_reads + master_read_dict["offsets"] = final_offsets + master_read_dict["trip_periodicity"] = master_trip_dict + master_read_dict["desc"] = "Null" + master_read_dict["mapped_reads"] = mapped_reads + master_read_dict["nuc_counts"] = nuc_count_dict + master_read_dict["dinuc_counts"] = dinuc_count_dict + master_read_dict["threeprime_nuc_counts"] = threeprime_nuc_count_dict + master_read_dict["metagene_counts"] = master_offset_dict + master_read_dict["stop_metagene_counts"] = master_metagene_stop_dict + master_read_dict["read_lengths"] = read_length_dict + master_read_dict["unambig_read_lengths"] = unambig_read_length_dict + master_read_dict["coding_counts"] = master_dict["unambiguous_coding_count"] + master_read_dict["noncoding_counts"] = master_dict["unambiguous_non_coding_count"] + master_read_dict["ambiguous_counts"] = master_dict["ambiguously_mapped_reads"] + master_read_dict["frequent_unmapped_reads"] = (sorted(unmapped_dict.items(), key=operator.itemgetter(1)))[-2000:] + master_read_dict["cutadapt_removed"] = 0 + master_read_dict["rrna_removed"] = 0 + #If no reads are removed by minus m there won't be an entry in the log file, so initiliase with 0 first and change if there is a line + master_read_dict["removed_minus_m"] = 0 + master_dict["removed_minus_m"] = 0 + # We work out the total counts for 5', cds 3' for differential translation here, would be better to do thisn in processor but need the offsets + master_read_dict["unambiguous_all_totals"] = {} + master_read_dict["unambiguous_fiveprime_totals"] = {} + master_read_dict["unambiguous_cds_totals"] = {} + master_read_dict["unambiguous_threeprime_totals"] = {} + + master_read_dict["ambiguous_all_totals"] = {} + master_read_dict["ambiguous_fiveprime_totals"] = {} + master_read_dict["ambiguous_cds_totals"] = {} + master_read_dict["ambiguous_threeprime_totals"] = {} + print ("calculating transcript counts") + for tran in master_read_dict: + if tran in transcriptome_info_dict: + five_total = 0 + cds_total = 0 + three_total = 0 + + ambig_five_total = 0 + ambig_cds_total = 0 + ambig_three_total = 0 + + cds_start = transcriptome_info_dict[tran]["cds_start"] + cds_stop = transcriptome_info_dict[tran]["cds_stop"] + + for readlen in master_read_dict[tran]["unambig"]: + if readlen in final_offsets["fiveprime"]["offsets"]: + offset = final_offsets["fiveprime"]["offsets"][readlen] + else: + offset = 15 + for pos in master_read_dict[tran]["unambig"][readlen]: + real_pos = pos+offset + if cds_start is None or cds_stop is None: + three_total += master_read_dict[tran]["unambig"][readlen][pos] + else: + if real_pos =cds_start and real_pos <= cds_stop: + cds_total += master_read_dict[tran]["unambig"][readlen][pos] + elif real_pos > cds_stop: + three_total += master_read_dict[tran]["unambig"][readlen][pos] + master_read_dict["unambiguous_all_totals"][tran] = five_total+cds_total+three_total + master_read_dict["unambiguous_fiveprime_totals"][tran] = five_total + master_read_dict["unambiguous_cds_totals"][tran] = cds_total + master_read_dict["unambiguous_threeprime_totals"][tran] = three_total + + for readlen in master_read_dict[tran]["ambig"]: + if readlen in final_offsets["fiveprime"]["offsets"]: + offset = final_offsets["fiveprime"]["offsets"][readlen] + else: + offset = 15 + for pos in master_read_dict[tran]["ambig"][readlen]: + if cds_start is None or cds_stop is None: + ambig_three_total += master_read_dict[tran]["ambig"][readlen][pos] + else: + real_pos = pos+offset + if real_pos < cds_start: + ambig_five_total += master_read_dict[tran]["ambig"][readlen][pos] + elif real_pos >=cds_start and real_pos <= cds_stop: + ambig_cds_total += master_read_dict[tran]["ambig"][readlen][pos] + elif real_pos > cds_stop: + ambig_three_total += master_read_dict[tran]["ambig"][readlen][pos] + + master_read_dict["ambiguous_all_totals"][tran] = five_total+cds_total+three_total+ambig_five_total+ambig_cds_total+ambig_three_total + master_read_dict["ambiguous_fiveprime_totals"][tran] = five_total+ambig_five_total + master_read_dict["ambiguous_cds_totals"][tran] = cds_total+ambig_cds_total + master_read_dict["ambiguous_threeprime_totals"][tran] = three_total+ambig_three_total + + print ("Writing out to sqlite file") + sqlite_db = SqliteDict(outputfile,autocommit=False) + for key in master_read_dict: + sqlite_db[key] = master_read_dict[key] + sqlite_db["description"] = desc + sqlite_db.commit() + sqlite_db.close() + + +if __name__ == "__main__": + if len(sys.argv) <= 2: + print ("Usage: python bam_to_sqlite.py ") + sys.exit() + bam_filepath = sys.argv[1] + annotation_sqlite_filepath = sys.argv[2] + desc = sys.argv[3] + outputfile = sys.argv[4] + process_bam(bam_filepath,annotation_sqlite_filepath,outputfile) diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/test-data/test.bam Binary file trips_bam_to_sqlite/test-data/test.bam has changed diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/test-data/test.bamv2.sqlite Binary file trips_bam_to_sqlite/test-data/test.bamv2.sqlite has changed diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/test-data/test_n_sorted.bam Binary file trips_bam_to_sqlite/test-data/test_n_sorted.bam has changed diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/test-data/test_n_sorted.bam_n_sorted.bam Binary file trips_bam_to_sqlite/test-data/test_n_sorted.bam_n_sorted.bam has changed diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/test-data/test_n_sorted.bamv2.sqlite Binary file trips_bam_to_sqlite/test-data/test_n_sorted.bamv2.sqlite has changed diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/test-data/test_org.sqlite Binary file trips_bam_to_sqlite/test-data/test_org.sqlite has changed diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/test-data/test_organism.sqlite diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/test-data/test_sorted.bam Binary file trips_bam_to_sqlite/test-data/test_sorted.bam has changed diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/test-data/test_sorted.bamv2.sqlite Binary file trips_bam_to_sqlite/test-data/test_sorted.bamv2.sqlite has changed diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/tool-data/builtin_sqlites.loc.sample --- /dev/null Thu Jan 01 00:00:00 1970 +0000 +++ b/trips_bam_to_sqlite/tool-data/builtin_sqlites.loc.sample Thu Nov 03 13:22:00 2022 +0000 @@ -0,0 +1,8 @@ +arabidopsis_thaliana_TAIR10 TAIR10 Arabidopsis thaliana (TAIR10) /mnt/data/organism_sqlites/Arabidopsis/arabidopsis_thaliana.TAIR10.sqlite +Escherichia_coli_str_k_12_substr_mg1655 Ecoli Escherichia coli str k12 substr mg1655 /mnt/data/organism_sqlites/E_coli_K12_MG1655/Escherichia_coli_str_k_12_substr_mg1655.sqlite +homo_sapiens_gencode25 g25 Homo sapiens (Gencode 25) /mnt/data/organism_sqlites/homo_sapiens_gencode25/homo_sapiens.gencode25.sqlite +homo_sapiens_gencode28 g28 Homo sapiens (Gencode 28) /mnt/data/organism_sqlites/homo_sapiens_gencode28/homo_sapiens.gencode28.sqlite +homo_sapiens_gencode39 g39 Homo sapiens (Gencode 39) /mnt/data/organism_sqlites/homo_sapiens_gencode39/homo_sapiens.gencode39.sqlite +mus_musculus_m10 m10 Mus musculus (Gencode m10) /mnt/data/organism_sqlites/mus_musculus_m10/mus_musculus.gencode10.sqlite +mus_musculus_m28 m28 Mus musculus (Gencode m28) /mnt/data/organism_sqlites/mus_musculus_m28/mus_musculus.gencode28.sqlite +sacCer_R64 R64 Saccharomyces cerevisiae (R64) /mnt/data/organism_sqlites/sacCer_R64/Saccharomyces_cerevisiae.R64.sqlite \ No newline at end of file diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/tool_data_table_conf.xml.sample --- /dev/null Thu Jan 01 00:00:00 1970 +0000 +++ b/trips_bam_to_sqlite/tool_data_table_conf.xml.sample Thu Nov 03 13:22:00 2022 +0000 @@ -0,0 +1,8 @@ + + + + + value, dbkey, name, path + +
+
\ No newline at end of file diff -r 104d6756bcbc -r a511e084e4e7 trips_bam_to_sqlite/trips_bam_to_sqlite.xml --- /dev/null Thu Jan 01 00:00:00 1970 +0000 +++ b/trips_bam_to_sqlite/trips_bam_to_sqlite.xml Thu Nov 03 13:22:00 2022 +0000 @@ -0,0 +1,62 @@ + + Convert BAM file to SQLITE for Trips-Viz + + pysam + sqlitedict + sqlite + samtools + + + + #if $refGenomeSource.genomeSource == "builtin": + python $__tool_directory__/bam_to_sqlite.py $input1 ${refGenomeSource.input2_builtin.fields.path} $input3 $output1 + #else: + python $__tool_directory__/bam_to_sqlite.py $input1 ${refGenomeSource.input2_file} $input3 $output1 + #end if + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + **What it does** + + Process your transcriptome read alignments for TRIPS-Viz + + Prerequisites: + - name-sorted bam file (samtools sort -n) + - TRIPS-Viz annotation file in SQLITE format. + + + +